Article Sidebar
Downloads
Main Article Content
Abstract
RÉSUMÉ
Introduction. La résistance aux antimicrobiens représente aujourd'hui une menace majeure pour la santé publique mondiale. L'émergence de souches bactériennes multirésistantes rend urgent le développement de nouvelles molécules d'origine végétale. Jatropha gossypifolia L. (Euphorbiaceae), largement utilisée en médecine traditionnelle africaine dans le traitement des infections, constitue une source prometteuse de composés bioactifs antimicrobiens. L’objectif visait à évaluer le profil phytochimique, la toxicité aiguë selon le protocole OCDE 420, l'activité antimicrobienne in vitro des extraits de feuilles de J. gossypifolia et développer une préformulation galénique. Méthodes. Les feuilles de Jatropha gossypifolia ont été extraites par macération (aqueuse, hydroéthanolique, méthanolique) et décoction, puis soumises à un criblage phytochimique qualitatif (Harborne ; Odebiyi-Sofowora). L'activité antimicrobienne a été évaluée par diffusion sur disques et microdilution (CMI/CMB) sur 13 souches, tandis que la toxicité aiguë a été testée sur des rats Wistar (OCDE 420, 2 000 mg/kg). Enfin, des gélules (JAPHACINE) ont été formulées et soumises aux contrôles pharmacotechniques réglementaires. Résultats. Le criblage phytochimique de Jatropha gossypifolia a révélé une grande diversité de composés bioactifs (alcaloïdes, flavonoïdes, tanins, terpénoïdes) et permis l'isolement de la jatrophénone, un diterpène à l'activité antimicrobienne significative. Sur les 13 espèces bactériennes testées, les extraits ont montré une efficacité majoritairement bactéricide avec des zones d'inhibition de 13 à 25 mm et des CMI allant de 39 à 1 250 mg/L. Enfin, l'étude confirme l'innocuité de la plante (DL₅₀ > 2 000 mg/kg) et la conformité des gélules formulées aux normes de la Pharmacopée Internationale. Conclusion. J. gossypifolia possède un potentiel antimicrobien significatif corrélé à sa richesse phytochimique. Son profil de sécurité favorable et la faisabilité galénique validée ouvrent la voie à un médicament traditionnel amélioré (MTA) accessible aux populations africaines.
ABSTRACT
Introduction. Antimicrobial resistance is a major global public health threat. The emergence of multidrug-resistant bacterial strains makes the development of new molecules of plant origin urgent. Jatropha gossypifolia L. (Euphorbiaceae), widely used in African traditional medicine for treating infections, is a promising source of bioactive antimicrobial compounds. The objective being To evaluate the phytochemical profile, acute toxicity (OECD 420 protocol), in vitro antimicrobial activity of leaf extracts of J. gossypifolia and develop a galenic preformulation. Methods. Leaves of Jatropha gossypifolia were extracted using maceration (aqueous, hydroethanolic, methanolic) and decoction, followed by qualitative phytochemical screening (Harborne; Odebiyi-Sofowora). Antimicrobial activity was evaluated via disc diffusion and microdilution (MIC/MBC) across 13 bacterial strains, while acute toxicity was tested on Wistar rats following OECD 420 guidelines at 2,000 mg/kg. Finally, capsules (JAPHACINE) were formulated and subjected to regulatory pharmacotechnical controls. Results. Phytochemical screening revealed a wide diversity of bioactive compounds (alkaloids, flavonoids, tannins, terpenoids) and led to the isolation of jatrophenone, a macrocyclic diterpene with significant antimicrobial activity. Tested on 13 bacterial species, the extracts showed predominantly bactericidal efficacy with inhibition zones ranging from 13 to 25 mm and MICs between 39 and 1,250 mg/L. Ultimately, the study confirms the plant's safety (LD50 > 2,000 mg/kg) and the compliance of the formulated capsules with International Pharmacopoeia standards. Conclusion. J. gossypifolia possesses significant antimicrobial potential correlated with its phytochemical richness. Its favorable safety profile and validated galenic feasibility pave the way for an improved traditional medicine (ITM) accessible to African populations.
Keywords
Article Details
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
References
- 1. World Health Organization. Traditional medicine strategy: 2014-2023. Geneva: WHO Press; 2013. 76 p.
- 2. Westh H, Zinn CS, Rosdahl VT. An international multicenter study of antimicrobial consumption and resistance in Staphylococcus aureus isolates from 15 hospitals in 14 countries. Microb Drug Resist. 2004;10(2):169-176.
- 3. Organisation Mondiale de la Santé. Stratégie de l'OMS pour la médecine traditionnelle 2014-2023. Genève : OMS ; 2014. p. 5-16.
- 4. Burkill HM. The useful plants of West Tropical Africa. 2nd ed. Vol. 2. Royal Botanic Gardens, Kew; 1994. 636 p.
- 5. Aiyelaagbe OO, Gloer JB. Jatrogrossidione, a novel anthraquinone from Jatropha gossypifolia. Rec Nat Prod. 2008;2(4):100-109.
- 6. Harborne JB. Phytochemical methods: A guide to modern techniques of plant analysis. 3rd ed. London: Chapman and Hall; 1998. 302 p.
- 7. Odebiyi OO, Sofowora EA. Phytochemical screening of Nigerian medicinal plants. Lloydia. 1978;41(3):41-234.
- 8. Mathabe MC, Nikolova RV, Lall N, Nyazema NZ. Antibacterial activities of medicinal plants used for the treatment of diarrhoea in Limpopo Province, South Africa. J Ethnopharmacol. 2006;105(1-2):286-293.
- 9. Organisation de Coopération et de Développement Économiques (OCDE). Ligne directrice n° 420 : Toxicité orale aiguë — Méthode de la dose fixe. In : Lignes directrices de l'OCDE pour les essais de produits chimiques. Paris : OCDE ; 2001. p. 1-15.
- 10. Kuete V, Foountain SH, Nkengfack AE. Antibacterial activity of the crude extracts and fractions of Gongronema latifolium against some gram-negative bacteria. J Ethnopharmacol. 2010;130(2):330-334.
- 11. Newton SM, Lau C, Wright CW. A review of antimycobacterial natural products. Phytother Res. 2002;16(2):99-107.
- 12. Shan B, Cai YZ, Brooks JD, Corke H. The in vitro antibacterial activity of dietary spice and medicinal herb extracts. Int J Food Microbiol. 2007;117(1):112-119.
- 13. Shannon LM, Schram JL, Haynes C. Dose conversion between animal and human studies. Lab Anim (NY). 2007;36(7):14-15.
- 14. Gatsing D, Adoga GI. Anti-Salmonella activity of the leaf extract of Cassia petersiana. Pak J Biol Sci. 2007;10(12):2095-2098.
- 15. Jennifer MA. Susceptibility testing of bacteria, fungi, and antimicrobial agents. BSAC; 2001.
- 16. Naïtali M, Dubois-Brissonnet F. Sensibilité aux biocides et résistances associées chez les bactéries à Gram négatif. Lett Microbiol. 2017;64(2):105-114.
- 17. Houssou Raymond F, Gbaguidi F, Gbenou J. Activité antimicrobienne de plantes médicinales du Bénin. J Soc Ouest-Afr Chim. 2010;29:83-91.
References
1. World Health Organization. Traditional medicine strategy: 2014-2023. Geneva: WHO Press; 2013. 76 p.
2. Westh H, Zinn CS, Rosdahl VT. An international multicenter study of antimicrobial consumption and resistance in Staphylococcus aureus isolates from 15 hospitals in 14 countries. Microb Drug Resist. 2004;10(2):169-176.
3. Organisation Mondiale de la Santé. Stratégie de l'OMS pour la médecine traditionnelle 2014-2023. Genève : OMS ; 2014. p. 5-16.
4. Burkill HM. The useful plants of West Tropical Africa. 2nd ed. Vol. 2. Royal Botanic Gardens, Kew; 1994. 636 p.
5. Aiyelaagbe OO, Gloer JB. Jatrogrossidione, a novel anthraquinone from Jatropha gossypifolia. Rec Nat Prod. 2008;2(4):100-109.
6. Harborne JB. Phytochemical methods: A guide to modern techniques of plant analysis. 3rd ed. London: Chapman and Hall; 1998. 302 p.
7. Odebiyi OO, Sofowora EA. Phytochemical screening of Nigerian medicinal plants. Lloydia. 1978;41(3):41-234.
8. Mathabe MC, Nikolova RV, Lall N, Nyazema NZ. Antibacterial activities of medicinal plants used for the treatment of diarrhoea in Limpopo Province, South Africa. J Ethnopharmacol. 2006;105(1-2):286-293.
9. Organisation de Coopération et de Développement Économiques (OCDE). Ligne directrice n° 420 : Toxicité orale aiguë — Méthode de la dose fixe. In : Lignes directrices de l'OCDE pour les essais de produits chimiques. Paris : OCDE ; 2001. p. 1-15.
10. Kuete V, Foountain SH, Nkengfack AE. Antibacterial activity of the crude extracts and fractions of Gongronema latifolium against some gram-negative bacteria. J Ethnopharmacol. 2010;130(2):330-334.
11. Newton SM, Lau C, Wright CW. A review of antimycobacterial natural products. Phytother Res. 2002;16(2):99-107.
12. Shan B, Cai YZ, Brooks JD, Corke H. The in vitro antibacterial activity of dietary spice and medicinal herb extracts. Int J Food Microbiol. 2007;117(1):112-119.
13. Shannon LM, Schram JL, Haynes C. Dose conversion between animal and human studies. Lab Anim (NY). 2007;36(7):14-15.
14. Gatsing D, Adoga GI. Anti-Salmonella activity of the leaf extract of Cassia petersiana. Pak J Biol Sci. 2007;10(12):2095-2098.
15. Jennifer MA. Susceptibility testing of bacteria, fungi, and antimicrobial agents. BSAC; 2001.
16. Naïtali M, Dubois-Brissonnet F. Sensibilité aux biocides et résistances associées chez les bactéries à Gram négatif. Lett Microbiol. 2017;64(2):105-114.
17. Houssou Raymond F, Gbaguidi F, Gbenou J. Activité antimicrobienne de plantes médicinales du Bénin. J Soc Ouest-Afr Chim. 2010;29:83-91.